医学动物实验案例教学课件

医学动物实验案例教学课件演讲人目录

01.

02.前言病例介绍

03.

04.护理评估护理诊断

05.

06.护理目标与措施并发症的观察及护理

07.

08.健康教育总结前言前言作为一名从事实验动物护理工作十余年的老护士，我始终记得带教时对学生说过的第一句话“实验动物不是冰冷的工具，它们是我们探索医学真理的‘无言战友’”医学动物实验是现代医学发展的基石——从新药研发到疾病机制研究，从手术技术验证到护理干预探索，每一个突破背后都有实验动物的贡献而在这个过程中，护理工作绝非“简单喂养”，它贯穿实验全程，直接影响模型稳定性、数据准确性，更关乎实验伦理的底线去年，我参与了某高校“急性重症胰腺炎（SAP）大鼠模型构建及护理干预”的课题实验中，一只编号为R-23的雄性SD大鼠让我至今难忘——它因术后护理得当，成为组内唯一存活超过72小时的模型，其病理数据为课题提供了关键支撑今天，我就以这个案例为切入点，和大家分享医学动物实验护理的全流程思考与实践病例介绍病例介绍实验背景课题组拟通过大鼠SAP模型，观察早期肠内营养（EN）对胰腺微循环的影响选择体重280-320g的SPF级雄性SD大鼠（共20只），购自XX实验动物中心，许可证号SCXK（沪）2021-0008，适应性饲养7天后建模建模过程采用经典“胆胰管逆行注射法”——10%水合氯醛（350mg/kg）腹腔注射麻醉，固定于恒温手术台（37℃），沿腹正中线切开约2cm，暴露十二指肠，找到胆胰管开口，插入3号头皮针（深度约

0.8cm），缓慢注射5%牛磺胆酸钠（

0.1ml/100g体重），耗时2分钟，确认无药液外渗后缝合切口（4-0丝线间断缝合）实验对象特征（以R-23为例）基础信息雄性，302g，8周龄，毛色光泽，活动灵活，术前3天进食量稳定（20-25g/日），粪便成型病例介绍术后状态苏醒后30分钟出现典型SAP症状——蜷缩于笼角，背毛竖立，呼吸急促（65次/分，术前40-45次/分），触诊腹部紧张，拒绝接触饲料，6小时未排便，切口处可见少量血性渗液护理评估护理评估实验动物护理评估需“多维度、动态化”，既要关注生理指标，也要观察行为学变化，更要结合实验目标调整重点针对R-23，我们从以下5个维度展开生命体征监测（术后24小时内每2小时一次）010203体温术后2小时心率185次/分呼吸频率60次/分

35.2℃（正常

36.5-（正常250-300次/（正常80-100次/

37.5℃），提示低分），显著降低分），浅快呼吸体温（麻醉后散热+（可能与疼痛、循（腹腔压力增高影炎症反应）；环抑制有关）；响膈肌运动）疼痛评估（采用大鼠疼痛行为评分表）行为表现弓背（2分）、活动减少（2分）、梳理毛发减少（1分）、对刺激反应减弱（1分），总分6分（0-3分无疼痛，4-6分中度疼痛，7-10分重度疼痛）切口与感染风险切口长度2cm，对合良好，可见少量血性渗液（无脓性分泌物），周围皮肤稍红肿（直径1cm），触诊无波动感；饲养环境独立通风笼具（IVC系统），温度22±2℃，湿度50±5%，氨浓度14ppm（符合GB14925-2010标准），但大鼠术后活动减少，可能增加粪便污染切口风险营养与代谢状态术后6小时未进食，术前12小时已禁食（常规操作），但SAP会导致胃肠功能抑制；体重术后8小时295g（较术前下降

2.3%），需警惕脱水（正常大鼠每日水分需求10-15ml/100g）实验相关性评估模型成功标志血清淀粉酶（AMY）1000U/L（术后6小时检测值1280U/L），符合SAP诊断；实验目标要求存活72小时以观察EN干预效果，当前需重点维持内环境稳定护理诊断护理诊断基于评估结果，结合实验动物护理的特殊性（无语言表达、依赖行为观察），我们明确了以下4项主要护理诊断急性疼痛与手术创伤、胰腺炎症刺激有关依据疼痛评分6分，弓背、活动减少等行为学表现在右侧编辑区输入内容

2.体温调节无效与麻醉后散热增加、炎症反应导致产热-散热失衡有关依据术后2小时体温

35.2℃，低于正常范围

3.有感染的危险与手术切口存在、大鼠自我清洁能力下降有关依据切口渗血、红肿，术后活动减少可能导致粪便污染

4.营养失调（低于机体需要量）与胃肠功能抑制、摄入不足有关依据术后6小时未进食，体重下降

2.3%，SAP导致消化吸收障碍护理目标与措施护理目标与措施护理目标需紧扣实验需求与动物福利，既要保证模型稳定性（如存活时间、指标一致性），也要减轻动物痛苦针对R-23，我们制定了“72小时存活+疼痛评分≤3分+无切口感染”的核心目标，并实施以下措施疼痛管理（目标术后24小时疼痛评分≤3分）药物干预术后1小时皮下注射布托啡诺（

0.1mg/kg），每8小时重复（根据大鼠代谢特点调整剂量，避免影响实验指标）；环境干预将笼具转移至安静区域（噪音50dB），覆盖遮光布（光照强度150-300lux），提供软质垫料（无尘木粒+棉絮），减少外界刺激；行为安抚每日3次用无菌棉签轻触大鼠背部（非切口区），观察反应（疼痛缓解时会短暂放松弓背）

2.体温维持（目标术后4小时体温回升至36-37℃）物理复温使用恒温垫（设置38℃），将大鼠置于垫上（避免直接接触以防烫伤），覆盖无菌纱布；疼痛管理（目标术后24小时疼痛评分≤3分）环境控温IVC系统温度上调至24℃，湿度维持50%监测调整每1小时测量肛温，3小时后体温升至

3.切口护理（目标72小时内切口无红肿扩大、无（较高湿度减少体表水分蒸发散热）；

35.8℃，5小时后稳定在

36.2℃，达标脓性分泌物）在右侧编辑区输入内容在右侧编辑区输入内容清洁消毒术后6小时、12小时、24小时用

0.5%碘伏棉签轻拭切口（避免用力摩擦），清除渗血及污染物；屏障保护给大鼠佩戴“伊丽莎白圈”（自制软质塑料圈，直径大于头部2cm），防止舔舐切口；环境消毒每日更换垫料（污染区域立即更换），笼具用

0.1%过氧乙酸擦拭，避免交叉感染疼痛管理（目标术后24小时疼痛评分≤3分）

4.营养支持（目标术后24小时恢复自主进食，72小时体重下降≤5%）早期肠内营养（EN）术后12小时（胃肠功能初步恢复）经口饲喂5%葡萄糖盐水（2ml/100g），每4小时一次；诱导进食提供软质饲料（常规饲料粉碎后加水调成糊状），放置于笼具角落（大鼠偏好隐蔽处进食），添加少量蜂蜜（甜味吸引）；监测评估术后18小时观察到大鼠舔食糊状饲料，24小时进食量约5g（相当于正常量的25%），36小时恢复至15g（正常量的60%），体重72小时为288g（下降

4.6%），达标并发症的观察及护理并发症的观察及护理医学动物实验中，并发症往往是模型失败的主要原因R-23的实验周期内，我们重点关注了以下3类并发症腹腔感染（最常见）观察要点体温持续38℃（炎症反应加重）、切口红肿范围2cm、渗液变为脓性（黄色或黄绿色）、大鼠出现“抖毛”（疼痛加剧）；护理措施一旦发现，立即取渗液做细菌培养（指导抗生素使用），局部用生理盐水冲洗后涂抹莫匹罗星软膏，全身注射头孢唑林（20mg/kg，每日2次）低血容量性休克（SAP进展期）观察要点心率300次/分（代偿期）→200次/分（失代偿）、黏膜苍白（牙龈、耳缘）、尿量减少（

0.5ml/小时）；护理措施快速补液（乳酸林格液3ml/100g皮下注射），抬高后肢（促进回心血量），联系实验员评估是否终止实验（避免动物过度痛苦）多器官功能障碍（MODS）观察要点呼吸频率120次/分（肺损伤）、血便（肠黏膜损伤）、抽搐（脑功能障碍）；护理措施此类并发症进展迅速，需提前与课题R-23在实验期间未出现上述并发症，这得益于组沟通“人道终点”（如出现抽搐立即安乐死），早期疼痛控制、体温维持及营养支持的及时干预遵循“3R原则”（替代、减少、优化）健康教育健康教育实验动物护理的核心不仅是技术操作，更是伦理意识与责任的传递在带教过程中，我常通过这个案例强调以下3点“观察”是护理的基石很多学生初期只关注“操作”（如注射、缝合），却忽视“观察”比如R-23术后蜷缩时，有学生认为“这是正常反应”，但仔细看会发现它的胡须在颤抖（疼痛的微表情），耳朵贴背（紧张）要教会学生用“放大镜”看动物行为——每一次翻身、每一口进食，都是评估健康状态的信号伦理贯穿全程实验动物福利不是“额外负担”，而是保证数据可靠性的前提例如，未控制疼痛的大鼠会因应激释放大量皮质醇，干扰炎症指标；未保温的大鼠代谢紊乱，影响药物动力学我们要让学生明白“尊重动物，就是尊重实验结果”团队协作是关键护理人员需与实验员、兽医密切沟通比如R-23的EN时机（术后12小时），是护理团队观察到“大鼠开始舔舐饮水嘴”后，与课题组讨论后确定的；疼痛药物的选择（布托啡诺而非吗啡），则参考了兽医对“不影响AMY指标”的建议总结总结回想起R-23实验结束时的场景它安静地躺在操作台上，完成最后一次采血后，在麻醉中安详离世课题组的研究生说“这只大鼠的数据让我们的论文多了3个关键图表”而我更想强调的是它教会我们的不仅是护理技巧，更是对生命的敬畏医学动物实验护理是“技术”与“温度”的结合——我们用专业知识维持模型稳定，用细致观察减轻动物痛苦，用伦理意识守护实验的底线希望通过这个案例，能让更多人理解每一只实验动物都是“沉默的贡献者”，而我们的护理，就是它们与医学进步之间最温暖的桥梁总结（注文中大鼠编号、实验参数均为模拟数据，实际实验需严格遵循《实验动物管理条例》及伦理审查要求）谢谢。